一文读懂百时美施贵宝细胞趋化检测模型
时间：2023-12-28 阅读：296
趋化是细胞响应化学刺激而产生的定向运动，它在免疫细胞招募、创口愈合以及癌症转移等生理病理活动中起着重要的作用。因此，调控趋化的相关分子成为药物研发中的重要靶点。然而，传统的趋化作用检测方法往往受限于通量。Boyden是一种常用的细胞趋化研究工具，它由半透膜隔离形成两个小室，细胞接种在上室，趋化因子加入下室，通过对迁移到半透膜下表面的细胞成像计数，可以定量趋化作用。
赛多利斯Incucyte® 实时活细胞分析系统配备了专门的趋化分析模块，能够在细胞培养箱中以96孔板的形式，实时可视化和自动定量分析细胞的趋化。
2018年百时美施贵宝(BMS)公司发表的一篇文章中就介绍了Incucyte® 对贴壁和悬浮细胞进行趋化检测方案。接下来，就让我们一起来看看这个方案吧~
实验方法
图1. Incucyte® 检测用到的ClearView板(Sartorius，货号 4582)由三部分组成：板盖、小室和下室
在实验开始前，根据实验需求对小室的上下表面进行包被。在上室中接种细胞并加入处理因素，在下室中加入趋化因子。将上下室组合后放入Incucyte® 系统中，并对小室的上下表面进行连续成像。如上室接种的是悬浮细胞，其穿过8μm的半透膜直接进入下室，则上室检测到的细胞会逐渐减少。如上室接种的是贴壁细胞，其穿过半透膜后会黏附在小室的下表面，则下表面检测到的细胞随时间会增加。
图2. Incucyte® 趋化检测的流程示意图
研究结果
单核细胞THP-1的趋化
CCR1是一种G 蛋白偶联受体(GPCR)，表达于单核细胞、巨噬细胞、DCs、破骨细胞、T 淋巴细胞和中性粒细胞。CCR1能与MIP-1α,RANTES 和leukotactin-1等趋化因子结合后诱导免疫细胞的活化和迁移，因此BMS将其作为类风湿性关节炎(RA)的靶点，通过MIP-1α诱导的THP-1趋化实验筛选CCR1的抑制剂。
图3A展示了不同浓度的MIP-1α加入下室作用16h后诱导迁移的THP-1细胞的数量，结果呈现倒U型模式，其拟合的EC50值为0.2nM(相较于传统Boyden小室测得的EC50为0.1nM)。图3B采用1nM MIP-1α作为趋化因子，同时加入不同浓度的CCR1拮抗剂——化合物6，在较高浓度的化合物6条件下，小室上表面未迁移的THP-1细胞更多，说明化合物6抑制THP-1细胞的趋化。图3C比较了6个CCR1拮抗剂用Incucyte® 与传统Boyden小室趋化检测结果，显示出良好的一致性。
图3. CCR1拮抗剂对MIP-1α诱导的THP-1细胞趋化的影响
树突状细胞(DC)的趋化
树突状细胞(DC)可以摄取和处理抗原、并转移至淋巴结将处理后的抗原递呈给初始T细胞，是有效的抗原呈递细胞(Antigen-presenting cells, APC)。研究表明iDC(未成熟细胞)表达CCR1、CCR2、CCR5、CXCR1、CXCR2和CXCR4，而mDC(成熟细胞)则表达CCR7和CXCR4。
CCR1配体MIP-1α和CCR2配体MCP-1可以特异性诱导iDC细胞趋化，并且显示出明显的剂量依赖性(EC50分别为0.16nM和5.6nM，图4A和B)，而对mDC无作用。CCR1抑制剂——化合物1特异性抑制MIP-1α(4nM)诱导的iDC趋化，CCR2抑制剂——化合物7特异性抑制MCP-1(20nM)诱导的iDC趋化(两者的IC50为1.3nM和1.1nM，图4C和D，对应传统Boyden小室检测结果是1.9nM和1.7nM)。
CXCR4的配体SDF-1α特异性诱导mDC细胞趋化(EC50为13nM，图4E)，CXCR4特异性拮抗剂AMD3100的IC50为21nM(图4F).
图4. DC细胞趋化检测
实体肿瘤细胞的趋化
乳腺癌是一种高转移性的常见癌症，在正常乳腺组织中，CXCR4的表达较低；然而在原发乳腺肿瘤和转移性乳腺癌里，CXCR4表达显著增高，且与患者预后差相关。研究表明，CXCR4配体SDF-1α确实特异性诱导乳腺癌细胞MDA-MB-231的趋化(EC50为22nM，图5A)，CXCR4拮抗剂AMD3100抑制MDA-MB-231细胞的趋化(IC50为82nM，图5B)。
图5. MDA-MB-231细胞趋化检测
T细胞的趋化
作为细胞免疫的重要组成部分，文章还研究了CXCR4配体SDF-1α对活化的T淋巴细胞和调节性T细胞Treg的趋化作用，对应的EC50分别为33nM和22nM(图6A和6C)，CXCR4抑制剂AMD3100可以抑制两种细胞的趋化，对应的IC50为99nM和89nM(图6B和6D)。
图6. SDF-1α/CXCR4介导的 T 细胞趋化检测
Incucyte® 趋化检测的重复性
以SDF-1α介导的人急性T淋巴细胞CCRF-CEM趋化为例，分别用Incucyte® 与传统Boyden小室方法定量检测10种CXCR4抑制剂对CCRF-CEM趋化的影响，将两种方法测得的IC50进行相关性分析，其相关系数R2为 0.8(图 7B)。在不同日期利用Incucyte® 进行两次独立的趋化测定，其相关系数R2值为0.85(图7C)。这均显示了Incucyte®趋化实验结果的良好重复性。
图7. Incucyte®趋化检测的重复性
Incucyte® 高通量趋化检测的自动化整合
前面THP-1、DC、T细胞和贴壁肿瘤细胞检测的案例证明Incucyte® 趋化检测的应用广、结果可信且重复性好，可用于癌症转移和免疫招募等相关疾病的药物筛选中。虽然Incucyte® 趋化检测相比传统Boyden小室已实现实时检测和自动定量，但整个实验流程中仍涉及孔板包被、稀释、移液和孔板转移等手动操作步骤，基于此，BMS利用实验室自动化整合了一个高效的流程来建立自动趋化检测平台(图 8A)。以SDF-1α介导的Treg细胞趋化为例，8种CXCR4拮抗化合物自动和手动性检测的IC50具有良好的相关性(R2为0.88，Z’因子为0.6，图8B)，说明该自动趋化检测平台的准确度和稳定性高。
图8. 整合Incucyte® 的自动趋化检测平台
传统的Boyden小室需要很高的接种细胞密度且是终点测定，需要用棉签等去除小室内未迁移的细胞，对小室下表面的细胞手动进行固定、染色、成像和计数，步骤繁琐。Incucyte® 小室内半透膜孔的密度低，所需接种的细胞数更低，对于原代或分化来源的珍贵样本更友好，且上、下室趋化因子的浓度差维持时间更长，可以进行更长时程的检测。Incucyte® 对小室的上下表面连续成像检测，不需要摸索检测时间点，可以导出已迁移和/或未迁移细胞的图片或动态视频，自动定量细胞迁移曲线，通过曲线斜率反应细胞趋化的速度。整个实验流程人为操作少，结果的准确度和重复性好，且可以进行自动化整合，实现更高通量的筛选需求(如下表)。
除了文中提到的T 细胞(Treg细胞、活化的T细胞)、iDC 、mDC、THP-1和 MDA-MB-231 细胞，BMS公司还构建了包括B 细胞、mTh17、中性粒细胞、巨噬细胞、A549 和 NHLF细胞在内的多种细胞类型的Incucyte® 趋化检测模型。这些模型被广泛应用于免疫、肿瘤、心血管和纤维化相关的多个药物研发项目中。
为什么要用Incucyte®实时活细胞分析系统呢？
♦ 培养箱内可长达数周的连续观察，最短几分钟间隔拍摄，减少人力，防止过多操作对细胞的伤害；只要放好您的细胞，其他交给Incucyte® 吧
♦ 6个板位，分别独立设置检测程序，可以兼容各种孔板和培养皿，通量高
♦ 高效简便的模块化软件设置和数据分析，输出图片、视频、生长曲线等多指标多参数
♦ 大于100种优化过的活细胞专用荧光试剂、耗材及详尽的Protocol，文献超过12000篇
-参考文献-
Chen J, Ribeiro B, Li H, Myer L, Chase P, Surti N, Lippy J, Zhang L, Cvijic ME. Leveraging the IncuCyte Technology for Higher-Throughput and Automated Chemotaxis Assays for Target Validation and Compound Characterization. SLAS Discov. 2018 Feb;23(2):122-131. doi: 10.1177/2472555217733437. Epub 2017 Sep 28. PMID: 28957636.